转化生长因子β1在食管鳞癌组织中的表达及临床意义

时间:2022-04-01 11:55:31  阅读:

[摘要] 目的 通过检测食管鳞癌组织标本及癌旁正常组织标本中转化生长因子β1 (TGF-β1)的水平,探讨TGF-β1与食管鳞癌发生发展之间的关系。 方法 收集2009年9月~2011年10月沈阳医学院奉天医院胸外科39例食管鳞癌组织标本及癌旁正常组织标本,用逆转录聚合酶链反应的方法对标本进行检测,比较食管鳞癌组织及癌旁正常组织TGF-β1信使RNA(TGF-β1 mRNA)的表达水平。 结果 食管鳞癌组织中TGF-β1 mRNA水平(0.76±0.09)显著高于癌旁正常组织(0.23±0.05);而随着病理分期Ⅰ~Ⅲ期TGF-β1 mRNA水平逐渐增高(Ⅰ期:0.52±0.06;Ⅱ期:0.73±0.03;Ⅲ期:0.92±0.05)。有淋巴结转移组的TGF-β1 mRNA水平(0.91±0.06)显著高于无淋巴结转移组(0.55±0.08)。随着肿瘤细胞局部浸润深度增加,TGF-β1 mRNA水平逐渐增高(T1:0.53±0.03;T2:0.69±0.05;T3:0.93±0.03)。 结论 TGF-β1水平的增高与食管鳞癌的发生发展关系密切。

[关键词] 转化生长因子β1;逆转录聚合酶链反应;食管鳞癌;病理特征

[中图分类号] R735.1 [文献标识码] A [文章编号] 1673-7210(2013)06(b)-0025-03

转化生长因子β(transforming growth factor,TGF-β)是一类多功能的多肽类细胞生长因子,几乎体内的每个细胞都产生TGF-β并存在其受体,参与调节细胞的生长、分化、形态发生及凋亡[1]。目前在人类中,发现有TGF-β1、TGF-β2、TGF-β3三个亚型,TGF-β1作为TGF-β超家族的一个重要成员,已被证实在细胞的生长与分化、细胞外基质(ECM)的合成与沉淀、血管的生成及细胞凋亡中起重要作用。在肿瘤的发生发展过程中,TGF-β1能诱导c-sis的表达,但抑制c-myc的表达,TGF-β1具有双相调节作用:在肿瘤早期,抑制肿瘤细胞的生长;在肿瘤的中晚期,它成为肿瘤生长的刺激因子。多年来,TGF-β仍是肿瘤领域研究的热点之一,研究发现TGF-β1作为一类具有多种生物学活性的细胞因子,参与了肿瘤的发生、进展和转移的各个环节并起到重要作用[2]。TGF-β1在食管鳞癌的研究中尚不多见,本研究对TGF-β1在食管鳞癌组织中的表达与食管鳞癌的临床分期、淋巴转移、肿瘤浸润深度的关系进行相关探讨,从而进一步明确TGF-β1在食管鳞癌的发生发展过程具有重要作用。

1 对象与方法

1.1 研究对象

收集2009年9月~2011年10月沈阳医学院奉天医院胸外科食管鳞癌标本共39例,其中包括癌组织上、下5~8 cm的正常组织,手术切除后30 min内置于液氮中保存。所有病例术前均未发现有远处转移,未行放疗、化疗,术后均有病理证实。39例病例中男25例,女14例;≥50岁者26例,<50岁者13例,年龄38~71岁,平均56.4岁;术后病理均为食管鳞癌;TNM分期Ⅰ期6例,Ⅱ期21例,Ⅲ期12例;其中23例有淋巴结转移。分期标准依照食管鳞癌AJCC指南中的食管鳞癌TNM分期标准划分。组织分化程度:高分化9例,中分化13例,低分化17例。

1.2 方法

1.2.1 RNA的提取 食管鳞癌组织与癌旁正常组织分别取100 mg,加入1 mL Trizol,组织匀浆器将组织匀浆,室温保持5 min使组织充分裂解,加入0.2 mL氯仿充分振荡15 s,室温保持3 min,12 000 r/min,4℃离心15 min,轻取最上层无色水相,加入0.5 mL异丙醇室温保持10 min,12 000 r/min,4℃离心10 min,弃上清,加入75%乙醇1 mL,12 000 r/min,4℃离心10 min,弃上清,室温干燥5~10 min,将沉淀溶于适量DEPC水中,测OD260/OD280及RNA浓度,分装,-80℃冰箱中保存。

1.2.2 反转录及PCR扩增 反转录体系如下: 5×PrimeScript Buffer 2 共4 μL,PrimeScript RT Enzyme MixⅠ 1 μL,RT Primer Mix 1 μL,总mRNA 10 μL,加RNase Free d H2O至 20 μL。反转录条件:37℃ 15 min,85℃ 5 s,4℃,反转录产物于-20℃保存。试剂:Rnase Free dH2O17.5 μL,10×PCR buffer 2.5 μL,dNTP 1.5 μL,TGF-β1上游引物0.5 μL,TGF-β1下游引物0.5 μL,Taq E 0.5 μL反转录PCR产物2 μL,总体积25 μL。PCR反应条件为:95℃变性2 min,94℃ 1 min,55℃ 1 min,72℃ 90 s,循环30个周期,最后于72℃延伸10 min。TGF-β1上游引物: 5"-GCCCTGGACACCAACTATGCT-3";TGF-β1下游引物: 5"-AGGCTCCAAATGTAGGGGCAGG-3",扩增片段长度为161 bp;内参β-actin上游引物: 5"-GTGGGCCGGTGTAGGCACCA-3";下游引物: 5"-GGTTGGCCTAGGGTTCAGG-3",扩增片段长度为246 bp。

1.2.3 琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物 取10 μL PCR产物进行2%琼脂糖凝胶电泳,凝胶经UVP凝胶成像分析系统进行扫描分析。TGF-β1 mRNA相对表达水平计算公式如下:某样品TGF-β1 mRNA相对表达水平=样品TGF-β1扫描值/样品β-actin扫描值。

1.3 统计学方法

采用统计软件SPSS 15.0对实验数据进行分析,计量资料数据以均数±标准差(x±s)表示,采用t检验。计数资料以率表示,采用χ2检验。以P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 食管鳞癌组织及癌旁正常组织TGF-β1 mRNA的表达水平

在39例食管鳞癌标本中,各期食管鳞癌组织中TGF-β1 mRNA水平均显著高于癌旁正常组织(P < 0.01)。见表1。

2.2 不同分期食管鳞癌组织中TGβ-β1 mRNA的表达水平

随着病理分期Ⅰ~Ⅲ期的增加,TGF-β1 mRNA表达水平逐渐增高(P < 0.05),见表2。

2.3 不同病理特征的食管鳞癌患者TGF-β1 mRNA的表达水平比较

不同年龄及不同组织分化程度的食管鳞癌组织中的TGF-β1 mRNA水平无显著差异(P > 0.05)。有淋巴结转移组的TGF-β1 mRNA水平显著高于无淋巴结转移组(P < 0.01)。在肿瘤细胞局部浸润深度中,T2组食管鳞癌组织中的TGF-β1 mRNA水平显著高于T1组(P < 0.01),同时T3组食管鳞癌组织中的TGF-β1 mRNA水平显著高于T2组(P < 0.01)。在国际抗癌联盟中的食管鳞癌标准划分中T1代表肿瘤浸润固有层或黏膜下层;T2代表肿瘤浸润肌层;T3代表肿瘤浸润外膜。见表2。

3 讨论

TGF-β是由两个结构相同或相近的、分子量为12 500的亚单位借二硫键连接的双体。每个亚基由112个氨基酸组成,这112氨基酸残基是由含400氨基酸残基的前体份子(per-pro-TGF-β)从羧基端裂解而来。TGF-β在人体内存在三种亚型,分别为TGF-β1、TGF-β2、TGF-β3,其中TGF-β1是人体内的主要存在形式。TGF-β的受体亦有3种亚型:TβRⅠ、TβRⅡ、 TβRⅢ。TGF-β通过磷酸化Smads启动细胞信号传导,发挥重要作用[3]。TGF-β受体-细胞内信号因子-基因表达-细胞生长抑制、分化或调亡,这一通路中的任何一个环节异常都将导致细胞异常增殖[4-5]。

一些研究显示,TGF-β与肿瘤发生发展有着密切的关系,并且对肿瘤细胞的生长具有抑制和促进双重生物学效应[6]。首先,TGF-β对早期肿瘤细胞的生长具有明显的抑制作用。TGF-β信号的肿瘤抑制作用源自其诱导多个基因表达的能力,这些基因参与抑制细胞增殖、诱导凋亡、激活自噬、通过基质成纤维细胞抑制生长因子的信号、抑制炎症,以及抑制血管生成。这些作用维持了正常组织内的动态平衡,防止肿瘤形成的早期阶段:①TGF-β可在转录及转录后水平抑制原癌基因c-myc的表达,使细胞生长停滞于G1期或延长G1期[7-9];②TGF-β通过抑癌基因p53通路对肿瘤的早期形成具有明显的阻抑作用[10];③TGF-β对周期蛋白依赖性激酶(cyclin dependent kinases,CDK)及周期蛋白发挥抑制作用。CDK和周期蛋白是完成细胞生长周期所必需的[11]。综上所述,TGF-β可能是肿瘤早期发生的一个重要的保护性标志物[12-13]。但是本实验中所得到的食管鳞癌组织标本多来源于中晚期肿瘤,故上述情况本实验中并未涉及。

同时,由于TGF-β对肿瘤发生发展的作用很复杂,因此一些研究也揭示了TGF-β对一些恶性肿瘤的发展起到促进作用。Massague等[11]研究显示TGF-β能抑制T和B淋巴细胞增殖分化,抑制NK细胞和单核细胞的杀伤活性,抑制免疫球蛋白合成,拮抗IL-2、TNF等免疫调节因子的作用,使肿瘤细胞逃避机体“免疫监视”;TGF-β还可以增加瘤细胞与细胞外基质相互作用,促进肿瘤细胞的浸润;诱导表达VEGF,对促进肿瘤血管生成方面有重要作用,从而促进肿瘤细胞的转移。研究证实在乳腺癌中,高水平的TGF-β1可以促进其浸润与转移[14]。本研究结果显示,各期食管鳞癌的TGF-β1 mRNA水平显著高于癌旁正常组织;也有文献报道,TGF-β在前列腺癌[15],大肠癌[16],乳腺癌[14]等恶性肿瘤中过度表达;并且本研究中还发现,随着肿瘤浸润深度的增加,TGF-β1 mRNA水平也随着增高;同时,有淋巴结转移的食管鳞癌组织中TGF-β1 mRNA水平也显著高于无淋巴结转移的食管鳞癌组织;而不同年龄及不同分化程度的食管鳞癌组织中的TGF-β1 mRNA水平无显著差异。这一结果显示,在食管鳞癌组织中,肿瘤细胞的浸润与转移和TGF-β1 mRNA有关。TGF-β1与肿瘤的侵袭转移相关性在大肠癌已经得到证实[17]。综合国内外研究与本实验结果,食管鳞癌的发生发展与TGF-β1的表达有关,即TGF-β的增高是促使食管鳞癌发生的一个重要因素[18];同时TGF-β与食管鳞癌的浸润和转移也密切相关。

目前国内外对TGF-β已有相关研究,但是涉及TGF-β1在食管鳞癌组织中的表达与病理分级、临床分期、肿瘤浸润深度、淋巴转移的关系的研究相对较少[19]。本研究分别针对不同病理分级、临床分期、肿瘤浸润深度、淋巴转移的食管鳞癌标本TGF-β1 mRNA水平进行检测,得出结论:TGF-β1在食管鳞癌的发生、进展与转移过程中有发挥重要的作用。但是,TGF-β1在肿瘤发展过程中的作用及机制尚没有完全明确,对于不同类型的肿瘤甚至不同的瘤细胞株而言,TGF-β1可能发挥不同甚至相反的生物学效应,有待进一步研究。而随着肿瘤免疫学和生物基因工程的发展,随着人们对转TGF-β1不断认识,这将为人们有效防治肿瘤提供一条新的途径。

[参考文献]

[1] Blobe GC, Schiemann WP, Lodish HF. Role of transforming Growth factor in human disease[J]. N Engl J Med, 2000, 342(18):1350-1358.

[2] 齐同谦. 转化生长因子β与肿瘤关系研究进展[J].国外医学:免疫学分册, 2002,25(1):20-22.

[3] Liang CJ,Yen YH,Hung LY, et al. Thalidomide inhibits fibronectin production in TGF-β1-treated normal and keloid fibroblasts via inhibition of the p38/Smad3 pathway[J].Biochem Pharmacol, 2013,2(13):165-167.

[4] Nishita M, Hashimoto MK, Ogata S, et al. International between Wnt and TGF-β signaling pathways during formation of Spemanns organizer [J]. Nature, 2007, 403(12):781-785.

[5] Osawa H, Shitara Y, Shoji H, et al. Mutation analysis of trans-forming growth factor β type receptor, Smad2, Smad3 and Smad4 in esophageal squamous cell carcinoma[J]. Int J Oncol, 2006, 17(10):723 -728.

[6] Bollard CM,Russig C,Calonge MJ, et al. Adapting a transforming growth factor beta-related tumor protection strategy to enhance antitumor[J].Immunity,2002, 99(11): 3179-3187.

[7] Muro - Cacho CA, Rosario-Ortiz K, Livingston S, et al. Defective transforming growth factor β signaling pathway in head and neck squamous cell carcinoma as evidenced by the lack of the expression of activated Smad2 [J]. Clin Cancer Res, 2001, 7(2):1618-1626.

[8] Ebisawa T, Fukuchi M, Murakami G, et al. Smurfl interacts with transforming growth factor (3 type - I receptor through Smad7 and induces receptor degredation[J].J Biol Chem, 2001, 276(16):12477.

[9] Huntley SP, Davies M, Matthews JB, et al. Attenuated type ⅡTGF-β receptor signaling in human malignant oral keratinocytes induces a less differentiated and more aggressive phenotype that is associated with matastasic dissemination[J]. Int J Cancer, 2004, 110(2):170-176.

[10] Spender LC,Carter MJ,O"Brien DI,et al. Transforming Growth Factor-β Directly Induces p53-up-regulated Modulator of Apoptosis (PUMA) during the Rapid Induction of Apoptosis in Myc-driven B-cell Lymphomas[J]. J Biol Chem, 2013, 288(37): 5198-5209.

[11] Massague J, Blain SW, Lo RS. TGF-β signaling in growth conlorl,cancer,and heritable disorders[J]. Cell, 2002, 103(2) : 2295-2309.

[12] 李红, 朱国卿, 王怀清. 食管癌组织中nm23-H1、TGF-β1的表达及意义[J].山东医药, 2008, 48(15):104-105.

[13] Weinberg RA.The biology of cancer[J].Gadand Science, 2007,12(1): 255.

[14] Ghellal A,Li C,Hayes M,et al. Prognostic significance of TGF beta 1 and TGF beta 3 in human breast carcinoma[J].Anticancer Res,2000,20(9):4413-4418.

[15] Wikstrum P,Damber J,Bergh A. Role of transforming growth factor-beta1 in prostate cancer[J]. Microsc Res Tech,2001, 52(4):411-419.

[16] Xiong B,Gong LL,Zhang F, et al. TGF beta1 expression and angiogenesis in colorectal cancer tissue[J]. World J Gastroenterol,2002, 8(3):496-498.

[17] Xiong B,Yuan HY,Hu MB, et al. Transforming growth factor-beta1 in invasion and metastasis in colorectal cancer[J]. World J Gastroenterol,2002, 8(4):674-678.

[18] 唐任光, 韦叶生, 韦彩成, 等. 转化生长因子β1基因多态性与食管癌的关系[J]. 中国实验诊断学, 2010, 14(3):415-416.

[19] 唐任光, 韦叶生, 陈宏明, 等. 食管癌患者血清TGF-β1水平的监测及临床意义[J].重庆医学, 2010, 39(3):322-323.

(收稿日期:2013-03-26 本文编辑:卫 轲)

推荐访问:食管 转化 表达 生长因子 组织

版权所有:汇朗范文网 2010-2024 未经授权禁止复制或建立镜像[汇朗范文网]所有资源完全免费共享

Powered by 汇朗范文网 © All Rights Reserved.。鲁ICP备12023014号